Insplorion S2 – Flow
SKU: S2
0,00 zloty
Insplorion S2 Flow SPECYFIKACJA
Wszechstronność jest na wyciągnięcie ręki. Prosty, elegancki i wytrzymały. Idealny instrument do badań biomolekularnych.
Insplorion S2 jest wyposażony w dwukanałową komorę przepływową do label-free badań w czasie rzeczywistym interakcji molekularnych i procesów adsorpcji powierzchniowej. System umożliwia prawdziwe pomiary w nanoskali w promieniu kilkudziesięciu nm powierzchni/próbki, z doskonałą kontrolą przepływu próbek i buforów.
Zintegrowana i zautomatyzowana obsługa płynów – Zautomatyzowana obsługa przepływu z kolejką poleceń oprogramowania, 6-drogowym zaworem wtryskowym i pompą strzykawkową z nieprzerwanym przepływem. Zintegrowana wymiana bufora i operacja płukania.
Dokładna kontrola temperatury – Szybka i stabilna regulacja temperatury w zakresie od 15 do 45°C i wahaniach poniżej 0,05°C.
Łatwa obsługa – Próbki są dostarczane za pomocą zintegrowanego systemu obsługi płynów, z pełną dostępnością dla użytkownika, co zapewnia łatwość obsługi i dokładną kontrolę. Działanie jest zautomatyzowane dzięki oprogramowaniu Insplorion InControl. Zdejmowana za pomocą jednego uchwytu komora przepływowa z oddzielną tacą nośną czujnika ułatwia codzienną obsługę i konserwację.
System podwójnej próbki – Mierz jednocześnie na maksymalnie dwóch kanałach. Uwzględnij kontrole w swoich eksperymentach lub przetestuj dwa warunki na raz.
Insplorion S2 nadaje się do każdego biomateriału i może z łatwością obsługiwać różne rodzaje biopróbek: – Lipidy – Białka – Kwasy nukleinowe – Wirusy – Biofilmy – Biominerały – Hydrożele
Wszechstronność – Insplorion S2 umożliwia wiele analiz procesu: – Adsorpcja molekularna na różnych powierzchniach – Tworzenie dwuwarstwy lipidowej – Interakcje zależne od temperatury – Zmiany konformacyjne – Rozpoznawanie biomolekularne – Zaszczepianie biomineralizacji – Tworzenie biofilmu – Dynamika ładowania i rozładowywania
Insplorion S2 Flow
Wszechstronność jest na wyciągnięcie ręki. Prosty, elegancki i wytrzymały. Idealny instrument do badań biomolekularnych.
Specyfikacja
Komora przepływowa (Flowcell)
| Parametr | Description |
|---|---|
| Pozycja chipa sensorowego | Podwójny kanał* |
| Typ dozowania | Pompa strzykawkowa z pętlą próbkową |
| Martwa objętość próbki | 20 µL |
| Standardowa objętość strzykawki | 250 µL ** |
| Typowy zakres przepływu | 12,5 – 250 µL/min *** |
| Standardowa pętla próbkowa | 200 µL |
| Materiały | Szkło szafirowe, tytan |
| Uszczelki i przewody | PTFE, FPM oraz elastomer silikonowy |
| Zakres temperatury | 15 – 45 °C ze stabilnością 0,1 °C |
* Kanały ustawione szeregowo
** Możliwość konfiguracji
*** Sterowane programowo
Sensory
| Parametr | Description |
|---|---|
| Wymiary | 9,5 × 9,5 mm, grubość 1 mm |
| Podłoże | Krzemionka topiona (fused silica) |
| Powierzchnia* | Nanostrukturyzowane złoto |
| Standardowe powłoki** | Niepowlekane, SiO₂, Al₂O₃, TiO₂ |
* Dostępne również nanostruktury srebra na zamówienie
** Możliwość zamówienia sensorów z niestandardowymi cienkimi warstwami
Charakterystyka pomiaru
| Parametr | Description |
|---|---|
| Typ pomiaru | Bez znaczników (Label-free) – nanosensing plazmoniczny |
| Źródło światła* | Lampa wolframowo-halogenowa, minimalna żywotność 2000 godzin |
| Średnica plamki pomiarowej | 1,5 mm |
| Rozdzielczość czasowa | Do 10 punktów pomiarowych na sekundę |
| Typowy poziom szumu** | < 0,01 nm (w domenie długości fali) |
| Głębokość sondowania | Do 30 nm |
* Dostępne opcje niestandardowe oraz wymienne źródła światła
** Przy częstotliwości próbkowania 1 Hz
System
| Parametr | Description |
|---|---|
| Wymiary | Szer. 65 × Gł. 42 × Wys. 36 cm |
| Masa | 30 kg |
Oprogramowanie
| Parametr | Description |
|---|---|
| Oprogramowanie sterujące | InControl 1.0 |
| System operacyjny | Kompatybilne z Microsoft Windows 10 |
| Format danych wyjściowych | Format własny (proprietary) z eksportem do CSV/TSV dla łatwej analizy w zewnętrznych programach |
| Analizowane parametry | Odczyt wieloparametrowy (efektywna zmiana stężenia powierzchniowego) |
Insplorion offers access to a large number of application notes describing the applications of nanoplasmonic detection systems in various research fields. Below, we present a selection of application notes covering various types of plasmon resonance research. To view all available application notes, please visit the website. Insplorion.
Presentation of the NanoPlasmonic Sensing technique and an overview of applications.
Presentation of the application of NanoPlasmonic Sensing in lipid research.
Summary of 3 publications using NPS for protein adsorption studies.
Study of the thermodynamics of hydrogen layer on SiO2 before deposition of Pd nanoparticles on the Pd nanoparticle surface using the indirect nanoplasmonic detection (INPS) technique.
Study of storage stability and hydrogen transport kinetics using INPS.
Using INPS to monitor local temperature changes on nanoparticle catalysts.
Using INPS technique on Pt/SiO2 catalysts to monitor catalyst sintering and damage in real time.
Using LSPR to study the kinetic and quantitative properties of molecular permeation in solar cells (DSSC).
NPS technology was used to measure the effect of confinement on the glass transition temperature (Tg) in thin polymer films and polymer composites.
Use of NPS for quantitative study of lipid vesicle adsorption kinetics.
Monitoring lipid membranes on Insplorion sensors with different substrates.
Acquisition of quantitative data on light-induced trans-cis and cis-trans processes as a function of irradiation intensity.
Using NPS technology to monitor the adsorption of CO2 molecules on polymer.
Application of NPS in monitoring first-order transitions from nematic to isotropic phase in liquid crystal layers
Insplorion XNano II was used to analyze spectral changes during the capture of virus-like particles on a gold sensor with nanoholes.
Using NPS to monitor gas adsorption on a surface-anchored metal-organic framework (SURMOF).
This note presents how nanostructured plasmonic substrates can provide a way to obtain a sensor with specific detection properties.
Using indirect nanoplasmonic sensing (INPS) to study the adsorption of dye molecules on flat, thin (12–70 nm) and dense (i.e. non-porous) TiO2 layers.
Study of catalytic processes on a 3D matrix with catalyst nanoparticles.
Lipid adsorption study in a combined NPS and QCD-D study.
The use of NPS and sensors mimicking dielectric nanoparticles for in situ monitoring of biocrown formation.
Study of the dynamics of enzymatic hydrolysis of polyester films using NPS and QCM-D.
Combination of NPS and QCM-D techniques for studying the dynamics between lipid bilayers.
NPS was used to evaluate the effect of layer thickness on the thermal stability of semi-crystalline, liquid crystal and glass-organic semiconductor layers.
Using LSPR to distinguish between mono- and multi-stranded DNA structures by analyzing hybridization processes.
Using LSPR to measure changes in the phase transition temperature of liposms.
Using LSPR to track molecules as they adsorb into a hydrogel.
Monitoring iron ion binding in magnetosome proteins and their mutations.
Using a combination of NPS and QCM-D to build an antibody biosensor in water.
Using Insplorion optical sensors to track the progress of internal precipitation processes in sodium batteries.
Presentation of the capabilities of sensors with active epoxy groups for protein immobilization in the Insplorion S2 system.
Using Insplorion optical sensors to track the progress of internal precipitation processes in lithium batteries.