Koszyk ofertowy
Products
Surface plasmon resonance
MP-SPR Bionavis
przyrządy MP-SPR
MP-SPR Wieloparametryczny rezonans plazmonów powierzchniowych
MP-SPR Wieloparametryczny rezonans plazmonów powierzchniowych
0,00 zloty
Wieloparametryczny rezonans plazmonów powierzchniowych (MP-SPR)
- Interakcje molekularne i biofarmaceutyki
- Biosensory
- Elektrochemiczny-MP-SPR
- Nanocząsteczki
- Pęcherzyki pozakomórkowe
- Komórki żywe
- Warstwy i powłoki
- Biomateriały
Rezonans plazmonów powierzchniowych (SPR) Zasada działania rezonansu plazmonów powierzchniowych (SPR) opiera się na zachowaniu elektronów na powierzchni metalu, gdy pada na nią światło pod określonym kątem. Elektrony te zaczynają wtedy oscylować wspólnie, tworząc tzw. falę plazmonów powierzchniowych. Zjawisko to zachodzi bardzo specyficznie – zależnie od kąta padania światła. Kiedy cząsteczki wiążą się z powierzchnią sensora, zmieniają sposób odbicia światła, co powoduje przesunięcie kąta, przy którym zachodzi rezonans. Mierząc to przesunięcie w czasie rzeczywistym, naukowcy mogą określić ilość związanej substancji oraz badać oddziaływania pomiędzy różnymi cząsteczkami.
Wieloparametryczny rezonans plazmonów powierzchniowych (MP-SPR) opiera się na zasadach teorii SPR. Dzięki specyficznemu układowi optycznemu z układem goniometrycznym umożliwia pomiar większej liczby parametrów niż tradycyjne instrumenty SPR, dostarczając pełną krzywą SPR.
Kompletne dane krzywej SPR są korzystne we wszystkich pomiarach oddziaływań i dostarczają kluczowych informacji w przypadku:
- pomiarów na żywych komórkach,
- pomiarów próbek surowych,
- charakterystyki warstw,
- pomiarów gazów,
- pracy bez konieczności stosowania kanału referencyjnego.
Kluczowe zalety technologii MP-SPR
- pomiarów na żywych komórkach,
- pomiarów próbek surowych,
- charakterystyki warstw,
- pomiarów gazów,
- pracy bez konieczności stosowania kanału referencyjnego
Pomiar przy wielu długościach fal – Dzięki unikalnej konfiguracji optycznej, technologia MP-SPR umożliwia zaawansowaną analizę próbek. Pomiar pełnej krzywej SPR, w połączeniu z unikalną możliwością pomiaru przy wielu długościach fal, zapewnia niezrównane możliwości analityczne. MP-SPR pozwala określić konformację próbki, grubość oraz współczynnik załamania warstwy lub powłoki. Urządzenia MP-SPR mogą być wyposażone w 2, 3, a nawet 4 długości fal w każdym kanale pomiarowym. Dodatkowe długości fal dostarczają bardziej szczegółowych informacji we wszystkich zastosowaniach i są szczególnie istotne w charakterystyce warstw, badaniach żywych komórek oraz analizie wielkości i stężenia pęcherzyków zewnątrzkomórkowych. Wszystkie lasery są używane jednocześnie we wszystkich kanałach przepływowych urządzenia.
Otrzymane dane analizowane są za pomocą unikalnego oprogramowania BioNavis LayerSolver dedykowanego dla systemu MP-SPR Navi™. To zaawansowane, a jednocześnie łatwe w obsłudze narzędzie pozwala określić grubość i współczynnik załamania światła warstw znajdujących się na powierzchni sensora na podstawie zmierzonych danych. Ta funkcjonalność otwiera szerokie możliwości zastosowań w naukach o materiałach, umożliwiając szczegółową charakterystykę funkcjonalnych powłok, takich jak powierzchnie samoczyszczące, materiały o właściwościach przeciwdrobnoustrojowych czy membrany filtracyjne. Technologię tę można efektywnie wykorzystywać jako narzędzie badawczo-rozwojowe lub kontrolne w takich dziedzinach jak technologie wyświetlaczy, półprzewodniki, panele słoneczne czy baterie.
Kompatybilność ze złożonymi próbkami
Pozbądź się „efektu objętościowego” i wyodrębnij rzeczywiste wiązanie bez potrzeby stosowania kanału referencyjnego!
Różnice w składzie cieczy pomiędzy próbką a buforem roboczym powodują zmianę współczynnika załamania światła, co z kolei objawia się jako przesunięcie mierzonej krzywej SPR. To zjawisko nazywane jest efektem objętościowym (ang. bulk effect) i występuje we wszystkich metodach rejestrujących zmiany współczynnika załamania w pobliżu powierzchni sensora. W tradycyjnych systemach SPR, imaging SPR lub lokalnym SPR (LSPR), wymagane są staranne kalibracje sygnału objętościowego z użyciem licznych wstrzyknięć roztworów tła oraz dedykowanego kanału referencyjnego, aby odseparować rzeczywiste wiązanie molekularne od niepożądanego efektu objętościowego. Co więcej, dopuszczalne są jedynie niewielkie zmiany w stężeniu rozpuszczalnika (np. DMSO). W przypadku instrumentów MP-SPR efekt objętościowy nie stanowi problemu, ponieważ możliwość pomiaru pełnej krzywej SPR pozwala na korelację parametrów uzyskiwanych metodą MP-SPR i umożliwia prostą, bezpośrednią charakterystykę zakłócającego sygnału objętościowego dzięki funkcji PureKinetics™. Funkcja ta jest dostępna we wszystkich instrumentach MP-SPR Navi™.
Funkcja PureKinetics™ zwiększa wiarygodność wyników, umożliwiając wyodrębnienie rzeczywistego sygnału wiązania. Zapewnia istotne korzyści, zwłaszcza w sytuacjach, gdy nie można zastosować komórki referencyjnej ze względu na właściwości próbki lub powierzchni sensora, albo gdy w eksperymencie wymagane są wysokie stężenia dodatków (np. DMSO w celu poprawy rozpuszczalności). PureKinetics™ jest szczególnie skuteczna w badaniach interakcji dwuwarstw lipidowych lub interakcji materiał–biocząsteczka, w których stworzenie kanału referencyjnego jest trudne. Funkcja ta ma również kluczowe znaczenie przy pomiarach przeprowadzanych na próbkach surowych.
Szybkie badania kinetyczne
BROSZURA LIFE SCIENCE BROSZURA MATERIAL SCIENCE
| Parametr / Model | 200 OTSO | 210A VASA | 220A NAALI | 400 KONTIO | 410A KAURIS | 420A ILVES |
|---|---|---|---|---|---|---|
| Kanały fluidyczne | 2 | 2 | 2 | 4 | 4 | 4 |
| Pomiar pełnej krzywej SPR | Tak (goniometryczna) | Tak | Tak | Tak | Tak | Tak |
| Automatyzacja | ✘ | ✔ (6 próbek) | ✔ (96/384-well + 6 vials) | ✘ | ✔ (6 vials) | ✔ (96/384 + 6 vials) |
| Autosampler | brak | 6 vial | 96/384 + 6 vial | brak | 6 vial | 96/384 + 6 vial |
| Odgazowywacz | – | ✔ | ✔ | – | ✔ | ✔ |
| Pompy strzykawkowe | – | ✔ | ✔ | ✔* | ✔ | ✔ |
| Perystaltyczna pompa | ✔ | – | – | ✔ | – | – |
| Wielkości długości fali / kanał | Do 4 | Do 4 | Do 4 | 2 | 2 | 2 |
| Zakres kątowy optyczny | 40°–78° | 40°–78° | 40°–78° | 40°–78° | 40°–78° | 40°–78° |
| Kontrola temperatury | 15–45 °C | 15–45 °C | 15–45 °C | precyzyjna dla komórek | 15–45 °C | 15–45 °C |
| Kopmatybilnośc z ropuszczalnikami organicznymi | Optional | ✔ | Optional | ✔ | ✔ | ✔ |
| PureKinetics | ✔ | ✔ | ✔ | ✔ | ✔ | ✔ |
| Zastosowania typowe | warstwy, biosensory, nanocząstki | biomateriały, interakcje, biokompatybilność | interakcje + warstwy + żywe komórki | adhezja i interakcje komórkowe | interakcje molekularne, biokompatybilność | interakcje molekularne, biofizyka |
Powinowactwo wiązania i kinetyka
Urządzenia MP-SPR mierzą powinowactwo i kinetykę reakcji wiązania cząsteczkowego bez obciążeń związanych z etykietowaniem.
Zasada wtrysku przepływowego MP-SPR szybko wprowadza próbkę do obszaru pomiarowego (tzw. celi przepływowej). Ciągłe pomiary ujawniają, jak szybko cząsteczki w przepływie (analit) wiążą się z przyłączoną do powierzchni cząsteczką ligandu i jak silna jest interakcja. Po wstrzyknięciu próbki bufor jest ponownie wlewany do obszaru pomiarowego. Ta zasada pomiaru umożliwia dopasowanie danych do modeli wiązania, ujawniając stałe powinowactwo wiązania oraz stałe szybkości asocjacji i dysocjacji. Oprogramowanie do analizy danych zawiera wiele modeli dopasowania odpowiednich dla różnych partnerów oddziałujących (np. małych cząsteczek, przeciwciał itp.).
Szybkie pomiary interakcji biomolekularnych bez konieczności regeneracji
W tradycyjnej metodzie miareczkowania wielocyklicznego (rysunek B) próbki analitu są wstrzykiwane na powierzchnię ligandu w różnych stężeniach. Po połączeniu próbki analitowi pozwala się na dysocjację od powierzchni poprzez przemycie buforem. Przed wstrzyknięciem kolejnego stężenia analitu, wszelkie pozostałe związane anality są usuwane poprzez wstrzyknięcie odpowiedniego roztworu regeneracyjnego.
KineticTitration (rysunek A) eliminuje potrzebę regeneracji pomiędzy stężeniami próbek i znacznie skraca czas potrzebny do przeprowadzenia pełnego eksperymentu interakcji biomolekularnych, potencjalnie nawet o połowę, w zależności od rodzaju testu i liczby stężeń. W typowej procedurze KineticTitration próbki analitu są wstrzykiwane na powierzchnię w serii od niskiego do wysokiego stężenia bez etapów dysocjacji i regeneracji pomiędzy wstrzyknięciami próbki. Szybkość dysocjacji jest mierzona po ostatniej próbce analitu.
Więcej informacji można znaleźć w Nocie Aplikacyjnej nr 155 – wiązanie małych cząsteczek leku z białkiem mierzone za pomocą KineticTitration.
Interakcje molekularne i biofarmaceutyki
MP-SPR dokładnie mierzy powinowactwo wiązania i kinetykę, a ponadto MP-SPR oferuje wyjątkowe możliwości i rozszerza zakres zastosowania technologii na szersze spektrum próbek.
Zdobądź więcej dzięki MP-SPR
Rezonans plazmonów powierzchniowych (SPR) jest stosowany do pomiaru oddziaływań molekularnych od trzech dekad. Technologia ta umożliwia ocenę powinowactwa i kinetyki w reakcjach wiązania molekularnego bez konieczności znakowania, co czyni ją techniką bez znaczników.
MP-SPR dokładnie mierzy oddziaływania między ligandami i analitami, takie jak zdarzenia wiązania przeciwciało-antygen lub lek-cel. Ponadto MP-SPR oferuje wyjątkowe możliwości, które zwiększają niezawodność wyników i rozszerzają zakres zastosowania technologii na szersze spektrum próbek.
Kluczowe zalety MP-SPR w badaniach interakcji molekularnych
Powinowactwo i kinetyka: Nawet cząsteczki o równym powinowactwie mogą wykazywać bardzo różne profile kinetyczne, co podkreśla znaczenie kinetyki jako kluczowych parametrów selekcji, szczególnie w odkrywaniu leków.
Działanie bez kanału referencyjnego: unikalna funkcja PureKinetics™ MP-SPR wykorzystuje kompleksowe pomiary krzywej SPR w celu dostarczenia informacji o wiązaniu, na które nie wpływają efekty rozpuszczalnika (efekt objętościowy). W przeciwieństwie do tradycyjnego SPR, nasza technologia mierzy efekty objętościowe w czasie rzeczywistym w każdym kanale pomiarowym, eliminując potrzebę oddzielnego kanału referencyjnego dla efektu objętościowego.
Zgodność ze złożonymi cieczami: Przeprowadzaj pomiary interakcji w różnych cieczach, w tym w płynach złożonych, takich jak 100% surowicy, osocza i śliny (funkcja PureKinetics)
Wiele metod wychwytywania ligandów: Wybierz spośród różnych metod wychwytywania ligandów, takich jak bezpośrednie sprzęganie, wychwytywanie powinowactwa lub kotwiczenie błonowe, w zależności od charakteru przyłączonej cząsteczki. Wysoka czułość: MP-SPR oferuje wysoką czułość, umożliwiając bezpośredni pomiar małych cząsteczek.
Badania nad białkami: MP-SPR to czuła platforma do określania wiązania przeciwciał i fragmentów z antygenem
Wszechstronna zgodność próbek: Pomiar interakcji z szeroką gamą próbek, w tym białek, peptydów, nukleotydów, cząsteczek leków, wirusów, nanocząsteczek, żywych komórek i bakterii.
Możliwość pomiaru lipidów i żywych komórek: Urządzenia MP-SPR mogą dokładnie mierzyć interakcje obejmujące cząsteczki zintegrowane z liposomami (ekstraktami błonowymi) i żywymi komórkami, ułatwiając badania interakcji w środowiskach przypominających naturalne.
Analiza konformacji próbki: Ocena konformacji próbki poprzez pomiar grubości warstwy.
Wykrywanie bez znaczników: MP-SPR działa na zasadzie wykrywania bez znaczników, eliminując potrzebę znakowania lub modyfikowania cząsteczek, co zachowuje ich naturalny stan i upraszcza przepływy pracy w testach.
Elektrochemia z MP-SPR
Nasze niezwykle czułe instrumenty MP-SPR można łączyć z różnymi technikami elektrochemicznymi, aby jednocześnie zbierać optyczne i elektrochemiczne dane w czasie rzeczywistym z tej samej powierzchni czujnika. Można stosować wiele metod elektrochemicznych, takich jak spektroskopia potencjometryczna, amperometryczna i impedancyjna. Potencjostat może wywoływać reakcje powierzchniowe (np. przełączanie elektrochemiczne).
Wyposaż swój MP-SPR w łatwo wymienną kinetyczną komorę przepływową elektrochemii (NOWOŚĆ) lub kuwetę elektrochemiczną do pomiarów statycznych!
Pomiary elektrochemiczne z MP-SPR
Opracuj czujniki elektrochemiczne na jednym urządzeniu (np. monitorowanie w czasie rzeczywistym zmian współczynnika refrakcji spowodowanych reakcjami redoks)
Pomiar grubości i pokrycia powierzchni podczas elektrochemicznego osadzania metali
Ilościowe określanie katalitycznych reakcji biologicznych
Pomiar reakcji przełączanych elektrycznie i funkcjonalnych biomateriałów
Promowanie funkcjonalizacji powierzchni wzmocnionej potencjałem
Wykonywanie pomiarów zmian konformacyjnych w czasie rzeczywistym
Biosensory
Instrumenty BioNavis są nieocenionymi narzędziami do opracowywania analiz w takich dziedzinach jak bezpieczeństwo żywności i pasz, bezpieczeństwo środowiska, diagnostyka kliniczna, kontrola graniczna i kontrola procesów.
Rozwój biosensorów – MP-SPR
Zaprojektowane z myślą o wszechstronności i precyzji, nasze instrumenty MP-SPR stanowią solidną platformę do rozwijania analiz w różnych zastosowaniach.
Uniwersalna platforma: instrumenty MP-SPR oferują niezrównaną elastyczność w opracowywaniu analiz. Niezależnie od tego, czy badasz nowe biomarkery, optymalizujesz powierzchnie czujników, czy udoskonalasz protokoły wykrywania, nasze instrumenty zapewniają narzędzia potrzebne do innowacji z pewnością siebie.
Wysoka czułość: instrumenty MP-SPR są bardzo czułe i potrafią wykrywać niewielkie zmiany w interakcjach molekularnych.
Modułowe powierzchnie czujników: łatwa modyfikacja powierzchni czujników SPR zarówno in-situ, jak i ex-situ w celu dostosowania ich do konkretnych wymagań analizy.
Zgodność mikroprzepływowa: przeprowadzaj kompleksowe testy materiałowe do zastosowań mikroprzepływowych bezpośrednio na naszych instrumentach.
Prosta walidacja: Usprawnij procesy walidacji dzięki naszemu intuicyjnemu interfejsowi i solidnym możliwościom analizy danych. Skutecznie waliduj wydajność testu, zapewniając dokładność i niezawodność na każdym etapie rozwoju biosensora.
Opracowywanie niestandardowych testów: Wzbogać swoje badania o swobodę opracowywania dowolnego typu testu przy użyciu wybranej próbki i materiału pomiarowego.
Prawdziwe próbki: Określ, jak działa Twój test z surową próbką, taką jak surowica, ślina, woda morska lub mocz.
Analiza stężeń MP-SPR mierzy stężenia nieznanych próbek z dużą precyzją.
Elektrochemiczne czujniki biologiczne
Nasze urządzenia MP-SPR można stosować w połączeniu z różnymi technikami elektrochemicznymi do jednoczesnego zbierania zarówno optycznych, jak i elektrochemicznych danych w czasie rzeczywistym z tej samej powierzchni czujnika. Można stosować wiele metod elektrochemicznych, takich jak spektroskopia potencjometryczna, amperometryczna lub impedancyjna. Potencjostat można stosować zarówno do wywoływania reakcji na powierzchni (np. przełączanie elektrochemiczne), jak i do zbierania informacji za pomocą technologii wrażliwej na inne rodzaje informacji niż zmiany optyczne.
Wyposaż swój MP-SPR w łatwo wymienialną komorę przepływową lub kuwetę elektrochemiczną!
Nowa dwukanałowa komora przepływowa EC kinetyczna już dostępna!
Wybierz MP-SPR dla elektrochemicznych biosensorów, aby:
Opracować proste elektrochemiczne czujniki w jednym urządzeniu
Określić ilościowo katalityczne bioreakcje
Pomierzyć reakcje elektroprzełączalne i funkcjonalne biomateriały
Wykonywać pomiary zmian konformacyjnych w czasie rzeczywistym
Nanocząstki
Badania nad nanocząstkami to obszar intensywnego zainteresowania naukowego w dziedzinie biomedycyny, optyki i elektroniki. Instrumenty MP-SPR są zaprojektowane do pomiaru interakcji nanocząstek i zapewniają kompleksową charakterystykę bez etykietowania.
Nanocząstki do dostarczania leków
Opracowanie nanocząstek do dostarczania leków i środków kontrastowych wymaga kompleksowego zrozumienia kilku krytycznych czynników: interakcji nanocząstek z lekiem, interakcji nanocząstek z celem, interakcji nanocząstek z żywymi komórkami i kontrolowanego uwalniania leków z nośników nanocząstek. Każdy z tych aspektów odgrywa kluczową rolę w optymalizacji skuteczności terapeutycznej i minimalizacji działań niepożądanych.
Technologia MP-SPR oferuje wyrafinowane podejście do badania tych skomplikowanych interakcji. W przeciwieństwie do tradycyjnych metod, które często wymagają etykietowania lub mogą zmieniać właściwości nanocząstek, MP-SPR umożliwia pomiary bez etykietowania, zachowując integralność i funkcjonalność nanocząstek. Ta możliwość jest szczególnie cenna dla dokładnej oceny kinetyki reakcji wiązania między nanocząsteczkami a ich celami lub cząsteczkami leków.
Dzięki wykorzystaniu technologii MP-SPR naukowcy i deweloperzy mogą przyspieszyć optymalizację systemów dostarczania leków i środków kontrastowych opartych na nanocząsteczkach. Niezależnie od tego, czy badają nowe formulacje, oceniają kinetykę interakcji, czy też udoskonalają mechanizmy uwalniania, MP-SPR oferuje wszechstronny zestaw narzędzi do rozwoju dziedziny nanomedycyny.
Kluczowe cechy MP-SPR w badaniach nanocząstek:
Dokładna charakterystyka wielkości i stężenia pęcherzyków pozakomórkowych
Wykrywanie bez znaczników utrzymujące natywne właściwości i funkcjonalności nanocząstek
Wysoka czułość
Charakterystyka uwalniania leku
Kinetyczna analiza interakcji wiążących w czasie rzeczywistym
Wszechstronność w badaniu różnych formulacji nanocząstek i ich interakcji w warunkach istotnych dla środowisk biologicznych.
Pomiar powstawania korony na nanocząstkach
Znalezienie optymalnej modyfikacji powierzchni nanocząstek
Dokładna charakterystyka pęcherzyków pozakomórkowych
Pęcherzyki pozakomórkowe (EV) są szeroko badane ze względu na swoje unikalne cechy i mają znaczący potencjał w różnych dziedzinach, takich jak badania i terapia nowotworów, diagnostyka, medycyna regeneracyjna i dostarczanie leków. Charakterystyka i pomiary interakcji EV są kluczowymi częściami procesu badawczego.
Wielkość i stężenie pęcherzyków pozakomórkowych
MP-SPR jest idealnym narzędziem do pomiaru wielkości EV, szczególnie w przypadku EV mniejszych niż 100 nm ze względu na wysoką czułość technologii. Unikalna wielodługościowa konfiguracja MP-SPR, wraz z kompletnymi pomiarami krzywej SPR, to kluczowe cechy pomiarów wielkości i stężenia.
Zestaw do charakteryzacji EV BioNavis zapewnia proste podejście do charakteryzacji wielkości i stężenia. Czujniki mogą być funkcjonalizowane przez użytkownika, przeciwciała wykrywające mogą być używane w zależności od badanych EV. Wykrywanie nie jest ograniczone przez używane media; stąd pomiary można wykonywać również w złożonych mediach.
Korona pęcherzyków zewnątrzkomórkowych
Pomiary BioNavis MP-SPR można wykonywać przy użyciu złożonych mediów, takich jak media do hodowli komórkowej, osocze lub surowica. Wykazano, że białka osocza oddziałują z pęcherzykami zewnątrzkomórkowymi, a MP-SPR wykorzystano do badania interakcji między pęcherzykami a białkami surowicy tworzącymi koronę białkową. Ponieważ pomiary są wykonywane w przepływie dynamicznym, umożliwia to badanie białek tworzących twardą i miękką koronę na pęcherzykach zewnątrzkomórkowych, można uzyskać próbki do dalszej analizy.
Powinowactwo i kinetyka
MP-SPR mierzy powinowactwo wiązania pęcherzyków zewnątrzkomórkowych z dużą precyzją i ich diagnostycznych cząsteczek (takich jak przeciwciała, peptydy lub aptamery) bez znaczników. Zasada dynamicznego przepływu zapewnia również kinetykę wiązania. Uzyskane pomiary kinetyczne można wykorzystać do poprawy parametrów interakcji diagnostycznych cząsteczek.
Wychwyt komórkowy
MP-SPR umożliwia utworzenie podwójnej warstwy lipidowej na powierzchni czujnika SiO2 w celu naśladowania interakcji komórkowej lub hodowanie komórek adherentnych na odpowiedniej powierzchni czujnika. Elastyczna konstrukcja szkiełka czujnika MP-SPR umożliwia stosowanie standardowych protokołów hodowli komórkowej w celu utworzenia warstwy konfluentnych komórek na szkiełku czujnika ex situ.
Dynamiczne pomiary można wykorzystać do obserwacji wychwytu pęcherzyków pozakomórkowych w żywych komórkach. Ta wyjątkowa możliwość, umożliwiona przez kompletny pomiar krzywej SPR MP-SPR, dostarcza nowych spostrzeżeń na temat wychwytu EV. Ponadto po pomiarach MP-SPR w czasie rzeczywistym szkiełko czujnika można dodatkowo zweryfikować ex situ za pomocą technik mikroskopowych, w tym AFM i SEM.
AN#151 Tworzenie korony białkowej na pęcherzyku w 100% surowicy
AN#156 Wychwyt pęcherzyka pozakomórkowego przez komórki
AN#164 Powinowactwo i kinetyka interakcji pęcherzyka pozakomórkowego z białkiem
Live Cell
Pomiar żywych komórek w czasie rzeczywistym i bez znakowania!
MP-SPR umożliwia biologicznie istotne odpowiedzi z żywych komórek, zachowując jednocześnie złożoność tych żywych modeli.
Wgląd w żywe modele w czasie rzeczywistym
Testy oparte na żywych komórkach są niezwykle cenne w zastosowaniach od opracowywania leków, medycyny regeneracyjnej i diagnostyki przyłóżkowej, po rozwój biosensorów i badania biologiczne nad odpornością lub rakiem.
Od czasu pierwszego badania opublikowanego w 2013 r. technologia MP-SPR stała się cennym narzędziem do badania żywych komórek. MP-SPR była w stanie wyjaśnić kinetykę wychwytu nanocząstek, drogi wchłaniania leków i profile aktywacji GPCR w niektórych ostatnich badaniach.
Technologia MP-SPR, z jej wyjątkową zdolnością do pomiaru kompletnych krzywych SPR przy użyciu wielu długości fal światła, jest przełomem w badaniach komórkowych. Jej zdolność do dostarczania kompleksowych i dokładnych informacji ma kluczowe znaczenie dla pogłębienia naszej wiedzy na temat interakcji i procesów komórkowych.
Komórki hodowane na powierzchniach czujników
Komórki hoduje się na powierzchni czujnika przy użyciu standardowych protokołów hodowli komórkowej. Próbki analitów (nanocząsteczki, związki leków) wprowadza się do przepływu. Ocenia się odpowiedzi komórkowe na analit w czasie rzeczywistym i wyjaśnia profile aktywacji komórek lub pobierania przez komórki.
To podejście ułatwia badanie:
Dróg adsorpcji danego związku farmaceutycznego
Optymalnej nanocząsteczki do dostarczania leku
Półmaksymalnego efektywnego stężenia (EC50) próbki dla żywych komórek
Sposób wejścia nanocząsteczek lub wirusa do komórek
Nasi klienci z powodzeniem wykonywali testy oparte na komórkach z analitami od związków leków o małej masie cząsteczkowej, hormonów i białek, aż po nieorganiczne nanocząsteczki, liposomy i pęcherzyki zewnątrzkomórkowe.
Żywe komórki wstrzykiwane na powierzchnie czujników
Żywe komórki są wprowadzane do cieczy (środowiska komórkowego) przepływającej nad powierzchnią czujnika, przy czym powierzchnia jest modyfikowana daną powłoką powierzchniową (np. błoną lipidową) lub ligandem powierzchniowym (receptorem). To podejście jest stosowane w badaniach wiązania/adhezji i dostarcza informacji na temat:
Powinowactwa komórek do receptora powierzchniowego, np. peptydu
Kinetycznego profilu powłoki przylegania komórek
Szybkości dysocjacji związanych komórek od powierzchni
Specyficzności powierzchni danej populacji komórek
Optymalnych właściwości przeciwporostowych lub przeciwdrobnoustrojowych powierzchni
Technologia MP-SPR została zbadana z komórkami i bakteriami przy użyciu różnych powłok, takich jak hydroksyapatyt, błony lipidowe, polimery i funkcjonalizowana różnymi ligandami, takimi jak peptydy, przeciwciała i kompleksy białkowe.
Powody, dla których warto wybrać MP-SPR do żywych komórek
Nadaje się do szerokiej gamy żywych komórek, w tym HeLa, Junket, A431, E.Coli i współhodowli
Badania wiązania/adhezji w czasie rzeczywistym bez etykiet
Rozszerzony zestaw danych z odpowiedzi komórkowych po załadowaniu próbki
Kompleksowy wybór podłoży czujników
Fizjologicznie istotne warunki utrzymywane podczas pomiarów (temperatura, naprężenie ścinające)
Połączenie MP-SPR z elektrochemią
Warstwy i powłoki
Cienkie stałe warstwy są zazwyczaj stosowane jako powłoki („nanowarstwy”), aby zapewnić funkcjonalność codziennym produktom, od elektroniki i wyświetlaczy telefonów, przez baterie, ogniwa słoneczne i opakowania, po komponenty samochodowe i klamki.
Zaawansowana analiza nanowarstw z technologią MP-SPR
Dzięki nowatorskiej konfiguracji wieloparametrycznego rezonansu plazmonów powierzchniowych (MP-SPR) firmy BioNavis łączymy plazmonikę, aby osiągnąć poziom Ångströma z konfiguracją goniometryczną podobną do elipsometru, aby uzyskać zakres roboczy i wiele długości fal podobnych do elipsometrii spektroskopowej, aby określić współczynnik załamania światła każdej mierzonej warstwy. Zapewnia to niezawodne pomiary grubości i współczynnika załamania światła nanowarstw, ich właściwości plazmonicznych i oddziaływań powierzchniowych.
Powody, dla których warto wybrać MP-SPR do pomiarów cienkich warstw stałych:
Pomiar ultracienkich warstw o grubości kilku Ångströmów dzięki pomiarowi w szerokim zakresie kątowym i wielu długościach fal
Grubość i współczynnik załamania światła mierzone jednocześnie za pomocą LayerSolver™
Niezwykle czułe instrumenty do kinetyki adsorpcji w czasie rzeczywistym na powierzchniach
Ze stanu suchego do mokrego przy tej samej konfiguracji – MP-SPR działa w obu stanach dzięki swojej konfiguracji goniometrycznej
Możliwa jest walidacja krzyżowa za pomocą mikroskopii i modelowania
Pomiary nie wymagają próżni
Pomiary można wykonywać w rozpuszczalnikach organicznych
Użyj MP-SPR do:
Wyboru najlepszej powłoki barierowej (nieprzywierającej/antyrefleksyjnej/wilgociowej)
Określenia minimalnej wymaganej grubości nanowarstw dla pożądanej funkcjonalności
Oceny jakości powłoki
Znalezienia procesu powlekania zapewniającego jednorodną warstwę
Określenia czasu potrzebnego na zgromadzenie się nanocząstek na powierzchni
Znalezienia idealnego pH i warunki potencjału elektrycznego dla procesu powlekania
Ocena pęcznienia warstwy w kontakcie z gazem, wilgocią lub rozpuszczalnikiem
Pomiar odpowiedzi SPR warstw metalowych
Łatwa obsługa szkiełek czujników do modyfikacji ex situ
Posiadamy szeroką gamę gotowych powierzchni czujników do wyboru, lub możesz wykonać własne powłoki w swojej siedzibie.
Biomateriały
Instrumenty BioNavis można stosować do badań nad szeroką gamą biomateriałów, takich jak biokompatybilne hydrożele, materiały funkcjonalne zawierające leki, materiały powłok przeciwporostowych i biomembrany.
Zastosowania w badaniach nad miękkimi materiałami
Monitorowanie osadzania warstwa po warstwie, od nanometrów do powłok o grubości mikrometrów!
Monitorowanie polimerów lub nanocząstek reagujących na bodziec
Monitorowanie osadzania filmu (in situ lub ex situ)
Obliczanie kinetyki interakcji i pokrycia powierzchni (masa na powierzchnię)
Monitorowanie przenikania gazu dla powłok barierowych
Monitorowanie pęcznienia i hydratacji
Monitorowanie uwalniania leku z matryc polimerowych
Wybór odpowiedniego modelu powierzchni i charakterystyka powierzchni
Badania interakcji biomateriałów ze specyficznymi białkami, surowicą i osoczem, biomembranami, komórkami i bakteriami
Ocena stabilności i jakości membrany (grubość i gęstość optyczna)
Kompleksowa charakterystyka biomateriałów z MP-SPR
Technologia MP-SPR umożliwia dokładną charakterystykę biomateriałów, od charakterystyki ich grubości i współczynnika refrakcji, po ocenę pęcznienia i odporności na biofouling oraz określenie stałych kinetycznych. Innymi słowy, MP-SPR umożliwia przeprowadzenie pełnego badania materiału, od charakterystyki interakcji z białkami, surowicą i osoczem, aż po interakcje z bakteriami i komórkami.
Zalety MP-SPR w badaniach materiałów miękkich:
Możliwość pomiarów w środowisku mokrym i suchym – pęcznienie wody/rozpuszczalnika nie przeszkadza
Możliwość pomiarów przy różnym pH, temperaturze, potencjale elektrycznym
Zmierzona grubość warstwy i współczynnik załamania światła
Monitorowanie nanofabrykacji on-line (warstwa po warstwie)
Wysoka czułość
Połączenie MP-SPR z elektrochemią
Często możliwy recykling czujników
Łatwe w użyciu szkiełka czujnika i uchwyt – ten sam substrat można zmierzyć po przeprowadzeniu MP-SPR w czasie rzeczywistym za pomocą AFM, XPS itp.
Łatwa obsługa szkiełek czujnika w celu modyfikacji i pomiarów ex situ
Application notes
AN#175 Monitoring Protein Corona Formation on Extracellular Vesicles Using MP-SPR
AN#174 Monitoring Nanoparticle-Biofilm Interactions Using MP-SPR
AN #172 BioNavis Dextran like (BND) sensors for label- free affinity and kinetic measurements
AN#171 Optical dispersion modelling of thin layers with multiwavelength MP-SPR
AN#170 Profiling of G protein-coupled receptor (GPCR) stimulation by small compounds in live cells
BioNavis offers access to a large number of application notes describing the applications of MP-SPR systems in various research areas. Below, we present a selection of application notes covering various types of plasmon resonance research. To view all available application notes, please visit the website. BioNavis.
Characterization of atomic layer deposited metal films and nanolaminates
Determination of the thickness of metallic monolayers.
Virus interaction studies using MP-SPR
Virus-peptide interactions and their use in cancer vaccine research.
Material Swelling Studies Using MP-SPR: Cellulose in Water Vapor and Polymer Barrier in Solvent Vapors
Study of material swelling parameters using cellulose as an example.
Biosensor for bacteria detection from powdered milk
Development of a biosensor for detecting bacteria in powdered milk.
Affinity and kinetics of extracellular vesicles – protein interaction
Study of the kinetics of protein reactions with extracellular vesicles (EVs).
Electrochemical Oxidation of Immobilized Methylene Blue Monitored by MP-SPR
Monitoring the oxidation process of methylene blue in the MP-SPR electrochemical cuvette.
Which molecule is the analyte in the binding reaction? 
In SPR, the ligand is a molecule immobilized on the sensor surface. The analyte is the molecule in the flow, and its interaction with the immobilized ligand is measured.
What do we mean by immobilization?
Immobilization is the (usually covalent) attachment of a molecule to a sensor surface. Various immobilization methods can be used, such as trapping or conjugating an amine, thiol, or aldehyde. Amine conjugation is a commonly used method, where a molecule, such as a protein, is covalently bound to the sensor surface via its amine group.
Immobilization involves at least three steps: surface activation, ligand coupling, and surface deactivation.
What is the solution volume effect?
The volume effect is a phenomenon that occurs when the refractive index (RI) of a sample differs from the RI of the running buffer. This difference in RI is typically caused by additives (e.g., residual base solvent) in the sample. During sample injection, the change in composition causes a shift in the SPR signal, and this is called the volume effect.
The volume shift is clearly noticeable in the measurement and can interfere with the measurement of sample binding, and it occurs simultaneously with binding. In molecular interaction experiments, the volume effect is typically compensated for by reducing the response of the reference channel (no ligand) from that of the measurement channel (ligand). MP-SPR angular measurement also provides a unique internal reference for the volume effect. We call this feature PureKinetics.
What does sensor surface regeneration mean?
Regeneration involves removing the analyte from the ligand, leaving the ligand intact and active on the surface.
Successful regeneration allows the ligand surface to be reused and another analyte to bind to the same surface. Regeneration is required for analytes that dissociate slowly. The appropriate regeneration solution depends on the interacting molecules and the type of interaction. Typically, appropriate regeneration solutions must be determined empirically.
Most often, regeneration solutions are low pH solutions, such as 10 mM glycine, or high pH solutions, such as 50 mM NaOH. Ligand activity must be confirmed after regeneration to ensure reliable results.
Which CMD sensor should I choose to measure interactions?
The selection of an appropriate carboxymethyldextran (CMD) sensor depends on the size of the analyte molecule.
If the analyte is a low molecular weight compound (e.g., a low molecular weight drug), the amount of ligand immobilized on the surface should be larger to obtain a sufficient signal. In this case, the ligand should be immobilized on the surface of the 3D CMD sensor to obtain more analyte binding sites on the surface.
If the analyte is a larger molecule (e.g., an antibody), the ligand should be immobilized on the 2D CMD surface.
A good rule of thumb is that if the analyte is less than 20 kDa, a 3D surface should be used.
Does changing the buffer affect the SPR signal?
Changing the buffer changes the refractive index at the surface, which causes a shift in the SPR signal.
Can I leave the buffer container open during measurement?
Long measurements in an open cuvette will cause solvent evaporation and thus an increase in its concentration, which should be avoided. Close open buffer flasks, and for long experiments, cover 96-well plates and sample vials with appropriate lids.
Should I clean the glass side of the sensor before use and if so, how?
It is very important to always clean the glass side before inserting the sensor into the instrument. When the flow cell is closed, the prism is tightly connected to the glass side of the sensor slide via an elastomer with a matching index. If the glass side is not clean, particles will adhere to the prism elastomer and interfere with measurements.
The glass side is cleaned gently by wiping it with KimWipes (lint-free paper) moistened with ethanol or isopropanol.
Can I clean and reuse the SPR sensor?
The gold sensor can often be completely cleaned by oxidation (using e.g. ammonia and H2O2) and the sensor is usually recyclable multiple times.
Hydrogel-coated sensors cannot be cleaned without removing the dextran coating.
The correct cleaning procedure depends on the sensor coating.
What is the typical sample volume needed for biochemical reactions?
Typical SPR sample volumes for all biochemical interaction experiments are 100 to 300 µl (up to 500 µl in the semi-automatic SPR Navi 200 and MP-SPR Navi 200 OTSO models).
Please note that the amount of sample needed per injection is actually concentration x volume!
Can we use ionic and other non-covalent coupling mechanisms (in particular HisTag, protein A, streptavidin) to immobilize ligands in MP-SPR?
A wide range of different coatings are available, suitable for both covalent and non-covalent protein conjugation.
We offer sensor functionalization for all of the above methods.
Can I measure lipid interactions using MP-SPR?
MP-SPR works well with many lipid forms. It offers the advantage of being able to check the conformation of the formed layer before injecting the protein. Based on its thickness and refractive index, it is possible to verify that the film is properly formed and is indeed a bilayer/liposome layer. For supported lipid bilayers, we recommend our SiO₂-coated sensors. For liposomes, the CMD sensor is recommended.
MP-SPR measurements have also been performed on lipid-binding sensors. The sensor has a three-dimensional hydrogel surface and lipophilic anchor groups that capture liposomes through nonspecific interactions. Other methods include the use of biotinylated liposomes, His-tagged proteins embedded in liposomes, DNA fragments embedded in liposomes, or silica surfaces (which self-adsorb liposomes).
What solvents can be used in MP-SPR Navi systems?
The standard flow cell material is PDMS and is compatible with, in addition to aqueous buffers, e.g., glycerol, ethylene glycol, and DMSO (dimethyl sulfoxide).
Highly chemically resistant flow cell materials include PEEK and Kalrez, and a much wider range of solvents can be used with them.
The MP-SPR Navi 200 OTSO also uses PDMS as the standard peristaltic tubing material. An external syringe pump can be used if other organic solvents are required.
A complete list of compatible solvents and vessels can be found in the appendix of the MP-SPR Navi user manual.
Does MP-SPR allow the use of soluble and membrane proteins?
Experiments can be performed with soluble and membrane proteins as well as proteins embedded in lipid vesicles.
Can I measure in solvents with a high refractive index?
The standard configuration will work with materials with a solid-state RI from n=1 to n=1.4, and even up to 1.45 when multi-wavelength systems are used.
If an even higher RI is required (for certain organic solvents), BioNavis offers a separate high RI configuration. The RI of the measuring liquid can then be up to n=1.51.
Why is the liposome deposition process not repeatable?
The most common problems with liposome deposition are due to surface and instrument cleanliness or changes in liposome size.
To achieve consistent lipid bilayer formation on the SiO₂ SPR sensor, cleaning before each lipid deposition is essential. An effective cleaning protocol involves using a CHAPS-Helmanex-ethanol-water mixture before each liposome deposition. The sensor should be used immediately after cleaning prior to deposition.
How does a hydrophobic surface affect the measurement?
Hydrophobic layers can cause air to form or be trapped in the flow cells. This air bubble will prevent good liquid-to-surface contact, negatively impacting SPR signal quality.
If an air bubble becomes trapped on the surface, consult your device's user manual for instructions on how to remove it. To prevent bubble formation, carefully degas buffers and be careful not to introduce air bubbles during sample injection.
Why does the CMD surface with immobilized ligand need to be stabilized before analyte injection?
EDC/NHS coupling typically binds a large number of proteins, but the binding conversion efficiency is higher than that of 100%. Stabilization (injection) after immobilization is necessary to remove unbound, adsorbed protein from the layer, which may negatively impact the experiment in the subsequent analysis phase.
Sometimes, after regeneration injections, a stabilization period (several minutes) is required when using the CMD-3D sensor. Regeneration solutions typically exhibit significant chemical differences from the measurement buffer and can cause hydrogel swelling/shrinkage or salt adsorption/desorption, leading to a small but systematic drift. In such cases, adding a few extra minutes to the baseline time between measurements is a good idea and will save time later in the analysis.
What should you pay attention to when preparing the buffer?
Deionized or purified water is recommended for buffer preparation. Filtered liquids, buffers, and samples help prevent the suspension from accidentally adhering to surfaces and affecting the SPR signal. Degassing solutions will also contribute to more stable results.
Which advanced kinetic software should you choose? Scrubber2 or TraceDrawer?
Kinetic software can be used to calculate binding affinity and kinetic parameters. Both Scrubber2 and TraceDrawer for MP-SPR Navi are compatible with MP-SPR data. TraceDrawer is easier to use (shorter raw data-to-report time and the ability to input data from different instruments) and is frequently updated and developed compared to Scrubber, so we recommend TraceDrawer for MP-SPR Navi.
How to calculate the thickness and refractive index of a layer?
BioNavis LayerSolver software is software specifically designed to calculate the thickness and refractive index of a layer.
Typical procedure based on the measurement of two wavelengths:
1) Measurement of the cleaned sample surface at two wavelengths simultaneously
2) Measurement of the deposited layer at two wavelengths
3) Analyzing both wavelengths simultaneously using LayerSolver
4) The dn/dlambda (RI wavelength increment) is required for the given material or similar type of materials.
Initial parameters for BioNavis gold sensors and 670 nm wavelength:
| Thickness | Ri | Ri | ||
| Layer | Description | [nm] | Real part n | Imaginary part k |
| 1 | Prism, Elastomer, Glass | 0 | 1.5202 | 0 |
| 2 | Cr | 2 (variables) | 2.5 (variables) | 3 (variables) |
| 3 | Ouch | 50 (variable) | 0.2 (variables) | 3.8 (variables) |
| 4 | Air or | 0 | 1.000273 or | 0 |
| Liquid | 1.3308 |
How to calculate the amount of proteins adsorbed on a surface?
The minimum SPR peak angle can be roughly converted to 10 RU, or 1 ng/cm² at 785 nm. The constant intensity angle depends on the sensor surface area. These values can be converted to surface protein concentration (moles/cm² = surface amount) if the molecular weight of the proteins is known (using the formula: Amount = Mass/Molar Mass, n = m/M). Surface coverage scaling can be enabled in the "Scaling Options" in both Viewer and Control software.
It's important to remember that this is an approximation (though widely accepted) and only works for proteins. This is because the optical properties of proteins are similar in most cases. For more exotic samples, knowledge of the RI (mass) vs. concentration (dn/dc) relationship (from the literature or measurements) is necessary to obtain an accurate conversion.
Below is the full conversion of SPR peak angle change to surface concentration in moles. Note that because protein molecular weight is taken into account, this formula is not actually the same for different proteins, but varies slightly for each one.
Amount (moles/cm²) = (SPR angle (degrees)*1000*10^-9 (g/cm²/degrees))/ protein molecular weight (g/mol)
Can the device operate in continuous mode?
You can leave the device on all the time if you plan to use it every day.
However, if you don't need to use the device every day, it's better to turn it off to save energy. If the power line is not stable enough or you experience occasional power outages, please add a UPS (uninterruptible power supply) to the device.
Where should the MP-SPR device be placed?
The MP-SPR Navi should be placed on a stable table. The device is very sensitive to mechanical shock, so avoid exposing it to vibrations that could disrupt measurements. Select a location where the device is not exposed to external heating or cooling sources, such as direct sunlight, near vents, or air conditioning units. External heating or cooling can cause temperature fluctuations and disrupt measurements.
Suitable storage conditions for BioNavis systems:
Temperature +15°C – +30°C, stable temperature.
Relative humidity from 25% to 60%.
Low dust, ISO-9 class room according to ISO-14644-1 standard ("room air" conditions according to US FED STD 209E standard)
Stable and grounded power source (USP recommended)
Keep away from direct sunlight
Keep away from sources of ignition
Keep away from direct drafts such as fans or air conditioners
How long can the sample be injected if the instrument loop volume is 250 µl?
The maximum injection time depends on the flow rate and loop volume.
If the instrument contains 250 µl loops and the flow rate is 30 µl/min, the maximum injection time is 7 minutes.
It is recommended to only inject 80% loop volumes when concentration is critical for measurement, as the sample tail will be diluted (depending on the instrument model). In automated models, the injected sample can be protected from dilution by air segments. Watch an animation and learn how flow injection works here.
Also remember that you do not have to inject the entire volume of the loop, you can perform shorter injections.
Once the sample is empty, the buffer will flow into the measurement channel.
Can I change the loop size?
The standard loop size is 250 µl, but the loop can easily be replaced with a smaller or larger one.
The automated instrument models (210A VASA, 220A NAALI, and 420A ILVES) allow for partial loop injection, which allows the loop to be filled with less sample than its total volume. This is a very useful feature when only a small amount of sample is available and does not require a loop change.
Can a fluorescence detector be added to the device?
Yes, BioNavis offers the ability to measure SPR and fluorescence signals simultaneously.
There are three options available:
- fluorescence coupled to surface plasmons (option 1)
- beam splitting fluorescence (option 2)
- fluorescence of fiber bundles (option 3).
I am using SPR Navi 200. Which channel corresponds to which sensor channel?
The BioNavis device is flexible and user-friendly. Therefore, we do not mark channels in the injection ports.
In MP-SPR Navi 200 OTSO the standard connection is as follows: left the injection port is connected to upper channel, and the right injection port to the lower flow channel.
However, there is an easy way to check this:
Once all the lines are dry, insert the gold sensor into the device and begin angular measurement. Fill one (!) of the channels with approximately 10% ethanol or water, and leave the other injection loop empty (air). Start the pump (no buffer, just air) with the injection valve set to "injection." Check which channel changes the signal. Remove the sensor and check which channel is wet.
Why should the instrument flow chamber remain open when the instrument is not in use?
When the flow chamber is closed, the prism is tightly connected to the glass side of the sensor slider via an elastomer with a matching index. If the flow chamber is closed for a long time, the elastomer may become damaged. A damaged elastomer would interfere with measurements.
You can check if the elastomer is in good condition by observing it with the naked eye for scratches, particles, dried salts, or by testing it.
Place the glass sensor (without coating) in the instrument and perform a full angular scan. The curve should increase to approximately 1° and remain flat. If this does not happen, the prism elastomer can be wiped with isopropanol (see the appropriate instrument's instruction manual, "Troubleshooting" section) and the instrument calibrated. If calibration does not resolve the issue, the prism will need to be replaced.
What is the spatial resolution of the SPR Navi instruments?
Note that spatial resolution is typically quoted for instruments that use a CCD camera as the detection component, such as SPR imaging. These instruments are typically limited by the camera resolution and do not offer as good sensitivity as focused beam or MP-SPR instruments.
In our case, the detection principle is based on a true goniometric configuration. The actual angular resolution of the goniometer is 0.001 degrees (the smallest goniometer step), but because we use advanced peak detection algorithms to find the minimum, the SPR minimum position is actually determined more precisely than the goniometer step.
The diameter of the laser "spot" on the sensor plate surface is approximately 0.5 mm. The MP-SPR measurement results are averaged over this area (i.e., the thickness is an average over an area of 0.2 mm²).
If by spatial resolution we mean the detection limit of the instrument, then the resolution depends significantly on the measurement system and the analyte. The amount of signal produced by the analyte can be increased by the sensor structure (three-dimensional hydrogels instead of two-dimensional monolayers), and for three-dimensional hydrogel sensors, the estimated accuracy of direct detection of low-molecular-weight analytes is in the nano-micromolar range (or approximately 300 fg/mm² – femtograms per square millimeter), BUT it depends on the interactions themselves.
What is the difference between traditional SPR and multiparametric (MP) SPR?
The key difference lies in the optical system. Traditional SPR uses a focused beam system, which provides an angular range of several degrees and measures only a single parameter—the SPR peak minimum, which is then plotted on a sensor image. The typical RI (refractive index) range of traditional SPR is 1.3–1.4 (the RI of the liquid).
MP-SPR utilizes a Kretschmann configuration and goniometric optics, enabling a scan range of 38 degrees and an RI of 1.0 to 1.4. In addition to measuring the SPR peak, the full SPR curve is monitored and other parameters are recorded. Parameter cross-correlation enables a unique PureKinetics feature. Wavelength measurements using multiple lasers enable characterization of layer thickness and refractive index, providing insight into, for example, molecular conformation changes or layer swelling.
The MP-SPR's special optical configuration enables a much broader range of applications in life sciences, biosensor development, and materials characterization. An exceptionally wide range of sensor surfaces is also available, including Ag, Cu, Al2O3, SiO2, PET, PS, cellulose, and CaP (calcium phosphate). MP-SPR can measure thin films (e.g., a single 3.7 Å graphene monolayer) as well as thicker films (several micrometers thick, e.g., polyelectrolytes or living cells), and measurements can be performed not only in the liquid phase but also in the gas phase.
What are the differences between angular measurements and angle measurements?
Angular scanning is the recommended measurement mode for most experiments.
In this mode, the light source scans continuously over a selected angle range, and the SPR peak (angle vs. intensity plot) can be monitored. Several SPR peak parameters can be tracked over time (e.g., PureKinetics, minimum peak position, minimum peak intensity). Thickness and refractive index can only be calculated from angle scan data!
In angle mode, the light angle is constant (the light source does not move), and the reflected light intensity is monitored as a function of time. Angle measurement allows for increased sampling rates—up to 250 points per second (4 ms sampling time), but collects less information about surface changes. In angle mode, the typical sampling rate is 2 seconds.
In angle mode, more information can therefore be collected from the measurement compared to angular measurement, so we strongly recommend using the angle scan mode.
What is the temperature range of the SPR Navi?
The temperature range is +20/-7°C from ambient temperature. This is approximately 15-45°C under typical laboratory conditions.
Temperature is controlled using a Peltier element. The well plate area of the MP-SPR Navi 220A NAALI and 420A ILVES models can be cooled to +4°C.
What laser wavelengths are available?
The standard instrument is equipped with a 670 nm laser in each flow channel.
Standard instruments with an additional laser kit (option -L) are equipped with 670 nm and 785 nm lasers in each channel.
Two wavelengths per flow channel are necessary to determine the thickness and refractive index.
Higher wavelengths have deeper penetration, greater dynamic range, but lower sensitivity.
We can also provide other wavelengths, subject to availability. To date, we have installed custom wavelengths: 635, 650, 670, 785, 850, and 980 nm.
We can also provide a custom input, allowing you to use your own light source (including fluorescent). The light source must be equipped with an external trigger.
Related products
